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產(chǎn)品報價： 面議

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產(chǎn)品熱度：加載中

產(chǎn)品型號：FL6000

適用范圍：高教 職教 基教

所在地區(qū)：其他

　　FL6000雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x是FL3500雙調(diào)制葉綠素?zé)晒鈨x的非常新升級版，專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻，葉綠體或類囊體懸浮物進行光合作用深入機理研究的強大科研工具。儀器具備雙通道測量控制，可控制測量樣品的溫度，并配備單翻轉(zhuǎn)光（STF），內(nèi)置多種可用戶自行修改的測量程序，可進行目前國際上對于葉綠素?zé)晒獾母鞣N深入機理研究。其核心結(jié)構(gòu)是包含了一個懸浮液標準樣品杯的光學(xué)測量頭，內(nèi)置3組LED光源和1個500 kHz/16位AD轉(zhuǎn)換的PIN二極管信號檢測器。AD轉(zhuǎn)換的增益和積分時間可以通過軟件控制。檢測器測量葉綠素?zé)晒庑盘柕臅r間分辨率可高達4 μs（快速版為1μs）。

　　應(yīng)用領(lǐng)域：

　　· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

　　· 生物和非生物脅迫的檢測

　　· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

　　· 代謝混亂研究

　　· 光合系統(tǒng)工作機理研究

　　· 受脅迫植物光合生理應(yīng)對策略研究

　　典型樣品：

　　· 藍藻（藍細菌）

　　· 綠藻

　　· 葉綠體懸浮物

　　· 類囊體懸浮物

　　· 植物碎片

　　功能特點：

　　· 內(nèi)置葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測量、PAM（脈沖調(diào)制）測量、OJIP快速熒光動力學(xué)測量、QA–再氧化動力學(xué)、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換、葉綠素?zé)晒獯銣绲葴y量程序，是世界上公認的功能全面的葉綠素?zé)晒鈨x

　　· 雙調(diào)制技術(shù)，可雙色調(diào)制測量光，具備調(diào)制光化學(xué)光和持續(xù)光化學(xué)光，可進行STF（單周轉(zhuǎn)光閃）、TTF（雙周轉(zhuǎn)光閃）和MTF（多周轉(zhuǎn)光閃）及定制FRR技術(shù)（Fast Repetition Rate）測量

　　· 標準版時間分辨率達4μs，快速版更高達1μs，是目前時間分辨率非常高的葉綠素?zé)晒鈨x

　　· 控制單元為雙通道，可連接溫度傳感器用于溫度控制、連接氧氣測量單元用于希爾反應(yīng)測量等

　　· 具備極高靈敏度，低檢測極限為1μgChla/L

　　· 測量光、光化光、飽和單反轉(zhuǎn)光光源顏色、強度均可定制

　　· 主機配備彩色觸摸顯示屏，可實時查看熒光曲線圖

　　技術(shù)參數(shù)：

　　· 實驗程序：葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)測量；PAM（脈沖調(diào)制）測量；OJIP快速熒光動力學(xué)測量；QA–再氧化動力學(xué)；S狀態(tài)轉(zhuǎn)換；快速葉綠素?zé)晒庹T導(dǎo)

　　· 熒光參數(shù)：

　　ú PAM熒光淬滅動力學(xué)測量：F₀，F(xiàn)m，F(xiàn)v，F(xiàn)₀’，F(xiàn)m’，F(xiàn)v’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，F(xiàn)v/Fm，F(xiàn)v’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多項葉綠素?zé)晒鈪?shù)與曲線；

　　ú OJIP快速熒光動力學(xué)測量：OJIP曲線與F₀、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F₀、Fv / F₀、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P₀、Psi_₀、Phi_E₀、Phi_D₀、Phi_Pav、ABS / RC、TR₀/ RC、ET₀/ RC、DI₀/ RC等20多項相關(guān)參數(shù)；

　　ú QA–再氧化動力學(xué)（QA-reoxidation kinetics）：測量QA–再氧化動力學(xué)曲線，用于擬合QA–再氧化過程中快相（Fast phase）、中間相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和時間常數(shù)（T1，T2，T3）

　　ú S狀態(tài)轉(zhuǎn)換（S-state test）：S-state test熒光衰減曲線，用于擬合計算無活性光系統(tǒng)II（PSII_X）反應(yīng)中心數(shù)量

　　ú 提供用戶自定義protocol功能，可實現(xiàn)PSII天線異質(zhì)性PSIIα與PSIIβ分析、PSII有效天線截面積（sPSII）等參數(shù)的測量（限快速版）

QA–再氧化動力學(xué)曲線和S-state test熒光衰減曲線（Li，2010）

　　· 時間分辨率（采樣頻率）：高靈敏度檢測器，標準版時間分辨率為4μs，快速版為1μs

　　· 低檢測極限：1μgChla/L

　　· 控制單元：配備彩色觸摸顯示屏，可實時查看熒光曲線圖

　　· Superhead測量室：

　　o 測量光閃：617nm紅橙光和455nm藍光，光閃時間2–5μs

　　o 單周轉(zhuǎn)飽和光閃：標準光源為630nm紅光，可選配455nm藍光，光強80000 μmol(photons)/m2.s，光閃時間20–50μs

　　o 持續(xù)光化學(xué)光：標準光源為630nm紅光，可選配455nm藍光，任選其一，光強3000 μmol(photons)/m2.s

　　o 樣品試管：底面積10×10mm，容積4ml

　　o AD轉(zhuǎn)換器：500 kHz/16–bit

　　· 定制superhead測量室（選配）：可分別定制測量光、飽和光閃和光化學(xué)光顏色（藍色、青色、琥珀色等）以及檢測波段（ChlA，ChlB）

　　· 遠紅外光源（選配）：用于激發(fā)光系統(tǒng)I，波長735nm

　　· 氧氣測量模塊（選配）：測量藻類的氧氣釋放

　　· 溫度控制（選配）：TR 2000溫度調(diào)節(jié)器，控溫范圍0–70℃，精確度0.1℃

　　· 電磁攪拌（選配）：密封不銹鋼外殼，IP64防護等級，手動轉(zhuǎn)扭調(diào)速100-1000rpm，8mm×3mm標準磁力棒

　　· 通訊接口：USB

　　· FluorWin軟件：定義或創(chuàng)建實驗方案、光源控制設(shè)置、數(shù)據(jù)輸出、分析處理和圖表顯示

　　典型應(yīng)用：

　　1. 中科院水生生物所王強研究員使用FL3500葉綠素?zé)晒鈨x（FL6000之前型號）和TL植物熱釋光系統(tǒng)證明亞硝酸鹽脅迫首先影響Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受體側(cè)(Zhan X, et al, 2017)。這種光合作用深入機理的研究經(jīng)常需要這兩種儀器來配合完成。

　　2.中科院新疆生態(tài)與地理研究所潘響亮研究員及其課題組使用FL3500葉綠素?zé)晒鈨x（FL6000之前型號）深入開展了環(huán)境中重金屬、鹽分、有毒化合物、除草劑、殺蟲劑、抗生素等各種有害物質(zhì)對藻類的毒理研究。通過FL3500獨有的高分辨率OJIP快速熒光動力學(xué)測量、QA–再氧化動力學(xué)、S狀態(tài)轉(zhuǎn)換等葉綠素?zé)晒鉁y量程序，全面揭示了不同濃度與處理時間對藻類光合系統(tǒng)造成損傷的毒理機制及其生態(tài)影響。目前，潘響亮課題組已經(jīng)使用FL3500（FL6000之前型號）在國際SCI期刊與國內(nèi)核心期刊上發(fā)表了二十余篇高水平文章。

　　產(chǎn)地：捷克

　　部分參考文獻：

　　1. ManaaA.,et al. (2019)Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoaWilld) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-114

　　2. SicoraC. I., et al. (2019)Regulation of PSII function in Cyanothecesp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–473

　　3. SmythersA. L.,et al. (2019)Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-712

　　4. AlbaneseP.,et al. (2018)Thylakoid proteome modulation in pea plants grown at different irradiances: quantitative proteomic profiling in a non‐model organism aided by transcriptomic data integration. The Plant Journal, Volume96, Issue4, Pages 786-800

　　5. Antal T., Konyukhov I., Volgusheva A., et al. (2018) Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

　　6. Antal T. K., Maslakov A., Yakovleva O. V., et al. (2018). Simulation of chlorophyll fluorescence rise and decay kinetics, and P700-related absorbance changes by using a rule-based kinetic Monte-Carlo method. Photosynthesis Research. DOI:10.1007/s11120-018-0564-2

　　7. Biswas S., Eaton-Rye J. J. (2018). PsbY is required for prevention of photodamage to photosystem II in a PsbM-lacking mutant of Synechocystissp. PCC 6803. Photosynthetica, 56(1), 200–209.

　　8. BonisteelE. M.,et al. (2018).Strain specific differences in rates of Photosystem II repair in picocyanobacteria correlate to differences in FtsH protein levels and isoform expression patterns. PLoS ONE 13(12): e0209115.

　　9. FangX., et al. (2018).Transcriptomic responses of the marine cyanobacterium Prochlorococcusto viral lysis products. Environmental Microbiology, doi: 10.1101/394122.

　　10. Kuthanová Trsková E., Belgio E., Yeates A. M.,et al. (2018) Antenna proton sensitivity determines photosynthetic light harvesting strategy, Journal of Experimental Botany, Volume 69, Issue 18, 14 August 2018, Pages 4483–4493